Дж. COX, MV., V. КОНТРЕРИ; Н. ЛЕТЕЛЬЄ, М.В.; Ф. САРАВІЯ; А. САНТА МАРІЯ, МВ;
А. ЛОБОС, М.В.; S. RECABARREN, Lic. Biol. MSc.
Відділ Науки про тваринництво, факультет ветеринарної медицини,
Університет Консепсьона, Касілла 537, Чілан, Чилі.
Поєднання GNRH та простагландину F 2 a дозволяє контролювати лютеїнову фазу та фолікулярну динаміку, що співіснують у яєчнику, полегшуючи точні схеми синхронізації еструса. Дослідження було покликане охарактеризувати репродуктивну реакцію на використання цієї комбінації для програми виявлення еструсу.
У дослідженні було розглянуто 423 клінічно здорових молочних корів з двох стад, від 1 до 7 отелень та відрегульований рівень виробництва з 7500 до 12500 кг. Починаючи з 50 днів після отелення, корови отримували 10 мкг бусереліну, а ті, хто мав жовте тіло, за даними УЗД через 7 днів, отримували 0,75 мг тіапросту. На момент введення тіапросту та через 72 год РІА збирав молоко для прогестерону.
Результати показали, що 90,7% (206/227) корів мали функціональне жовте тіло на момент введення простагландину, 93,7% (193/206) відповіли лютеолізом, а 85,0% (164/193) показали поведінку еструса. Інтервал до еструса становив 66 ± 15,2 год, при цьому 93,9% корів мали еструс між 2 та 4 днями, з високим відсотком (54,9%) еструсів на 3 день після введення тіапросту. Нарешті, показник зачаття був подібним до нелікованих контролів (55,4% (144/269) проти 50,3% (82/163) для лікуваних та нелікованих відповідно. Не було виявлено відмінностей між стадами за будь-яким параметром, врахованим у дослідженні. за результатами можна зробити висновок, що комбінація GnRH та PGF 2 a може бути ефективною альтернативою підходу до проблеми виявлення еструсу в обмежених стадах молочного стада.
Ключові слова: GnRH-PGF 2 a, синхронізація еструса, велика рогата худоба.
Ключові слова: GnRH-PGF 2 a, синхронізація еструсу, молочна худоба.
ВСТУП
Виявлено, що виявлення еструсу є одним із факторів, який суттєво впливає на репродуктивну ефективність у обмежених стадах. Вираз естрозної поведінки корів на годівниці, як правило, пригнічується вимогами економічного управління виробництвом. Поверхня підлог, сегрегація самок у групах годування, в даний час збільшення частоти замовлень та розпорядку їжі, сприяють перешкоджанню формуванню сексуально активних груп (GSA) у тварин і з цим є можливість спостереження за діяльністю верхової їзди відповідальним персоналом (Hurnik et al., 1975; Vailes and Britt, 1990; King, 1996). Це впливає на використання еструса, що сприяє визначенню інтервалу отелення та вагітності стада.
Синхронізація еструсу у молочної худоби в основному була включена як інструмент для полегшення виявлення еструсу. Незважаючи на те, що він виявився економічним, у більшості обставин рівень синхронізації не дозволив сконцентруватись на виступі еструса, що оптимізує конформацію ASG, а також у розподілі персоналу, відповідального за виявлення або врешті-решт, можливість запліднення виправлена час. Основною проблемою, яку демонструють сучасні схеми, є відсутність втручання у фолікулярну динаміку, що не дозволяє адекватно контролювати інтервал між синхронізацією та овуляцією (Fortune et al., 1991; Kastelie et al., 1990; Thatcher et al., 1996).
Нещодавно була запропонована схема синхронізації, що поєднує GnRH та простагландин F 2 a (PGF 2 Q) (Twagimamungu et al., 1995; Pursley et al., 1995). Введення бусереліну ацетату, агоніста GnRH, викликає підвищення рівня ЛГ і ФСГ через 2-4 год, що залежно від кількості рецепторів, що знаходяться у фолікулах, може спричинити овуляцію або атрезію середніх та великих фолікулів (Twagimamungu et al., 1995). Крім того, підвищення рівня ФСГ після овуляції або регресії домінантних фолікулів призведе до вербування нової групи фолікулів, з якої вийде той, що в кінцевому підсумку овулює (Wolfenson et al., 1994; Pursley et al., 1995). Таким чином, введення GnRH або аналогів, що передують PGF 2, або аналогів може спричинити не тільки інгібування подачі нових нагрівань до простагландину (Thatcher et al., 1989; Twagiramungu et al., 1992), але також більша гомогенізація групи фолікулів, які братимуть участь в овуляторному процесі після введення PGF 2 роки або подібного, і, отже, більша синхронізація у передлежанні еструса.
На національному рівні відсутня інформація, яка дозволяє оцінити вплив цієї гормональної комбінації на відтворення комерційних стад в умовах утримання, за різних умов годівлі та інфраструктури. Відомо, що площини годівлі можуть впливати на фолікулярну динаміку у молочних корів (Savio et al., 1993; Thatcher et al., 1996), а конструкція кормових двориків та організація персоналу можуть визначати ефективність програм. Контроль відтворення (King, 1996 ).
Аналогічно, інформація, повідомлена на міжнародному рівні, не враховує циркулюючі рівні прогестерону в оброблених тваринах, так що це дозволяє більш точно визначити репродуктивну реакцію комерційних стад та ефективність виявлення еструсів, для яких ці схеми вони призначені . Ця робота спрямована на характеристику репродуктивної реакції обмежених молочних корів, синхронізованих із вищезазначеною схемою, використовуючи рівні циркулюючого прогестерону як еталон.
МАТЕРІАЛ І МЕТОДИ
У дослідженні брали участь загалом 423 гольштейнських фрізьких корів, стан тіла яких коливався від 1,5 до 3,5 за шкалою, описаною Edmonson et al. (1989), від 1 до 7 пологів і від 2 стад в ув'язненні. За клінічною та ультразвуковою оцінкою використовували гінекологічно придатних корів (лінійний трансректальний датчик типу A Aloka 210, 5 МГц), з прогнозованим рівнем продуктивності від 7500 до 12500 кг та з інтервалом від двору щонайменше 50 днів. Корів годували повноцінним раціоном на основі силосу для кукурудзи, силосу райграсу, забруднень люцерни та райграсу та суміші концентратів та мінеральних солей з метою задоволення харчових потреб виробництва (NRC, 1988). Корів утримували у добре провітрюваних цементних кормових двориках і розміщувались у системах «вільного стоянка» з мішками з мішковини та вільним доступом до чистої води. Стада були піддані програмі профілактичної медицини, яка передбачала дегельмінтизацію та щеплення проти ендемічних бактеріальних та вірусних захворювань.
Програма синхронізації еструса базувалася на i.m. на 0-й день 10 мкг аналога GnRH (бусереліну ацетат, Conceptal®, Hoechst), після чого через 7 днів вводять дозу внутрішньомісячно. 0,75 мг тіапросту (Iliren®, Hoechst), синтетичного аналога PGF 2 a. На момент введення тіапросту та через 48 годин були взяті зразки молока для оцінки рівня прогестерону. Також основа клею була пофарбована контрастною кольоровою фарбою для полегшення виявлення еструса (Macmillan et al., 1988). Виявлення еструсу проводилося шляхом безпосереднього спостереження за ознаками еструсу кожні 6-8 год протягом принаймні 1 години за допомогою досвідченого персоналу. Корова, яка залишалася нерухомою, поки їхала інша корова, розглядалася в еструсі. Корів штучно запліднювали комерційною спермою через 8-12 год після виявлення еструсу, використовуючи стандартні процедури.
Оцінку прогестерону в молоці проводили за твердофазним АРВ (PPC; Coat-a-Count, DPC, Каліфорнія). Зразки молока збирали в колби з дихроматом калію як консервантом і витримували до 5 днів у холодильнику (Nachreiner et al., 1992; Eissa et al., 1995). Потім жир видаляли центрифугуванням, а зразки зберігали в пробірках Еппендорфа при -20 ° C до моменту RIA. Варіації у межах аналізу та між аналізами становили 9,3 та 14,4% відповідно.
Характеристика репродуктивної реакції проводилася шляхом оцінки кількості корів, які представили лютеоліз, кількості корів, виявлених в еструсі, порівняно з тими, які представляли лютеоліз, інтервалу між лікуванням та еструсом, розподілу еструса та швидкості зачаття від запліднення синхронізованих корів. Останню порівнювали з контрольною групою, складеною з корів з еквівалентним рівнем продуктивності, з порівнянним інтервалом після отелення та спонтанною еструсом в тій же процедурі.
Для аналізу даних були розраховані засоби та відсотки. Останні трансформувались методом Блісса та аналізувались за допомогою критерію t Стьюдента, використовуючи статистичний пакет Statview®. A p 2 a вважався значним у молочних корів.
Відсоток виявлення лютеолізу та еструсу в схемі синхронізації еструсу на основі GnRH та
PGF 2 аналог у молочних корів.