The; rpa (Hordeum vulgare L

ua.howwwblog.info - Кроки, щоб схуднути завтра

Рекомендувати документи

Gyulai G, Kiss E, Heszky L (2004) Біотехнологія ячменю. в культурній флорі Угорщини. VIII/14. стор. 274-289. (За ред.) Л. Томчані, Г Турчані. Ячмінь - Hordeum vulgare L., Akadémiai Kiadó, Будапешт.

I. Культура ембріонів У перших культурах зародків ячменю (Браун 1906) мінімальне середовище містило лише п’ять макроелементів: CaSO4 (5,8 мМ), MgSO4 (1 мМ), KCl (3,4 мМ), KH2PO4 (1,8 мМ), FeCl3, сахароза (146 мМ) з додаванням. З амінокислот, випробуваних як джерело азоту, ефективною була лише аспарагінова кислота, тоді як тирозин та фенілаланін демонстрували високе інгібування. Також був продемонстрований подальший стимулюючий ефект гідролізату казеїну (5 г/л) (Kent and Brink 1947, Dunwell 1986). Цікаво, що казеїн не виявляв активності як надлишку джерела азоту, а завдяки збільшенню осмотичного тиску середовища (ефект казеїну) (Ziebur et al. 1950, Dunwell 1986), що призвело до розвитку високоосмотичних середовищ (Ziebur and Brink 1951 у Dunwell 1986). В якому збільшена кількість сахарози (365 мМ) дозволяла вирощувати зародки ячменю in vitro 7-9 днів та розміром лише 0,3-1,1 мм (Norstog 1956, 1965 та Jensen 1983 у Dunwell 1986).

Використання екстракту ендосперму з різних однодольних видів дало особливі результати, оскільки стерильні зародки ячменю, вирощені на ендоспермі пшениці (пшеничне борошно), демонстрували більш швидкий ріст порівняно з ембріонами, вирощеними на власній поживній тканині ячменю (Brown and Stingl 1907 та Harlan and Pope 1926). Затверділе на агарі середовище, що використовується і сьогодні, вперше було використано Меррі (Merry 1942 в Dunwell 1986).

годин при світлі при 20 ° C) є оптимальним (Dunwell 1986, Jensen 1988). Будь-які диплоїдні регенеранти можна легко розрізнити за морфологічними ознаками, наприклад на основі ворсистості листового блюса, що розвивається, або більшого розміру стоми або кількості хлоропластів у клітинах закриття стоми (вдвічі більше, ніж гаплоїдів).

Гібрид ячменю та пшениці (Tritordeum), як і тритикале, має великий потенціал. Гексаплоїдний тритордей (2n = 6x = 42, HchHchAABB) є амфіплоїдом Hordeum chilense x Triticum durum, який демонструє кілька вигідних агрономічних властивостей: хорошу родючість, високий вміст білка, хорошу хромосомну стабільність (Martin et al. 1999, Hernandéz et al. ). Створення трилінійних (тригенеричних) гібридів також було успішним у H.jubatum (4x) x H.compressum (2x) x H.vulgare (4x) (Orton and Tai 1977 в Koblitz 1986), H.vulgare x Triticum aestivum x S.cereale та S.montanum (Федак та Армстронг 1983, Кобліц 1986), H.vulgare x Triticale (8x) x Triticale (6x) (Clauss 1980) та H.brachyantherum x H.bogdanii x H.vulgare (Schooler and Anderson 1979, Koblitz 1986) у схрещуваннях, на жаль, з високою хромосомною стабільністю (табл. 3).

Аналіз SCV у популяціях нащадків, ступінь якого була набагато вищою, ніж очікувалось у ячменю, через не мітотичний шок у процесі трансформації, а у фазі калюсу (Bregitzer et al. 1998). Сомаклони ячменю, як і більшість культурних рослин, до цього часу внесли лише невеликий внесок у пряме сортовиробництво, але в результаті з’явилося багато нових мутантів та варіантів для генетичного аналізу (Dudits and Heszky 2000).

VI. Виділення мутантів Серед методів виділення мутантів, що застосовуються в зернових культурах (Barabás 1959 та 1962, Reilly 1985), селекцію мутантів у ячмені здійснювали за різними цілями (див. Пивний ячмінь, кормовий ячмінь тощо), наприклад змінити вміст і склад білка, розвинути стійкість до амінокислот або амінокислот. У перших роботах (Bright et al. 1979, Dunwell 1986)

Гіффард та ін. (1982 в Dunwell 1986) виділив стійкі до гербіцидів лінії Asulam в культурі ембріонів. Для виділення мутантів, стійких до солі, Ортон (1980, Dunwell 1986) проводив попередні експерименти лише в культурі калюсу, порівнюючи H.vulgare та H.jubatum. Через велике значення відбору мутантів для стійкості до захворювань було використано ряд експериментальних підходів. Бранчард (1982, Dunwell 1986) проводив експерименти з резистентності до грибів Rhynchosporium у культурах калюсів, отриманих мезокотилом. Однак, використовуючи 1,2-пропандіолцелобіозу ("ринкоспорозид" за назвою гриба), токсин виявився неефективним на клітинному рівні, і препарат не впливав на ріст калюсу. Для розвитку стійкості до фузаріозу Wenzel et al. (1984 в Dunwell 1986) використовував фузаріову кислоту (токсин фузарію) у концентрації 0,2 мМ, однак на рівні калюсу можна було відібрати лише вцілілі клітинні лінії. Картографування відібраних дотепер мутацій, а також молекулярне маркування мутантів дають все більше і більше даних для подальшого вдосконалення карти геному ячменю.

(AT) 10CACA (AT) 10 та складна РСР, напр. (AT) 10 (CA) 10, наявність якого підтверджена у численних комбінаціях ячменю (Moore et al. 1995). CpG повторюється. Особливими типами мікросателітів є мікросупутники динуклеотидів, які відіграють ключову роль у виділенні та клонуванні ячменю та всіх рослинних генів. Найбільш поширеними є CG-динуклеотидні повтори (5'CG3 ''/3'GC5 ') n (інакше позначені як CpG - цитозин-фосфодіефір-гуанін, CpG-повтор, CpG-блок, CpG-мотиви, CpG-острови тощо) . Відомо, що базовий розподіл ДНК не є рівномірним. Незважаючи на рівне співвідношення A + G = C + T (A –аденин, T - тимін, C - цитозин, G - гуанін), вміст G + C значно відрізняється від теоретичних 50%, напр. у ячмені та пшениці 45%, у людини 40%. Різниця пов’язана з рослинами

(особливо однодольні та тварини) «використовують більше» синонімічних триплетів амінокислот (додатково 13 кодонів-синонімів для 18 найважливіших амінокислот), тоді як дводольні використовують менше (лише 7 синонімічних триплетів з 18 амінокислот). Наприклад, триплет GAA гена, що кодує глутамінову кислоту, має нижчий вміст GC, ніж інший синонімічний триплет GAG глутамінової кислоти. Ось чому виявилось настільки складно визначити взаємну гібридизацію ДНК (Саузерн-Ботт) одних і тих же генів, що містять будинок, у однодольних та дводольних рослин. Подальша універсальна особливість повторень CpG полягає в тому, що вони знаходяться близько (у поєднанні з) або близько до початкової точки (5 'кінець, промотор) кодуючих генів, що дозволяє виділити ефективні гени ячменю, які можуть бути виконані в відсутність невеликої кількості рослинних промоторів (Moore et al., 1993 та 1995). Вони нерівномірно розподілені в геномі, демонструючи велику різницю в кількості n-повторів (наприклад, у геномі людини екзон 1 гена FMR1 тендітної Х-хромосомної хвороби містить тринуклеотид CpCpG, повторний, подібний за довжиною CpG повторний динуклеотид. у пацієнтів (CCG) 6-60, в транспортному засобі (CCG) 50-200 і у пацієнта (метилированний-CCG) 200

Популярні

Зараз читають

Біотехнологія ячменю (Hordeum vulgare L.)

Рекомендувати документи