Резюме

Призначення

Для оцінки придатності загальних режимів дезінфекції для одноразових наконечників тонометра та для оцінки того, чи бажана дезінфекція багаторазових призм або використання одноразових наконечників.

інфекційний

Методи

Ми використовуємо одноразові наконечники тонометра, використовуючи той же матеріал та діаметр наконечника, що і стандартна призма тонометра Goldmann. Штами Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis та Candida albicans тестували відповідно до європейського стандарту для дезінфекційних досліджень. Оцінено антимікробну ефективність наступних методів дезінфекції: сухі серветки, хлібні серветки (Alpro®), 3% перекис водню, 0,5% бензалконію хлорид та 0,5% Pantasept® протягом 1, 5 та 15 хвилин. Всі тести були проведені тричі, і всі умови були перевірені в двох примірниках.

Результати

Хімчистка та замочування 1 хвилиною 3% перекису водню були неефективними для всіх мікроорганізмів. Мінімальні серветки, 1 хвилинне замочування 0,5% бензалконію хлориду або 3% перекису водню не були ефективними для B. subtilis. Всмоктування 0,5% Pantasept ® було ефективним протягом 1 хвилини для всіх досліджуваних мікроорганізмів, тоді як 3% перекис водню та 0,5% бензалконію хлорид були ефективними, якщо проводити їх принаймні 5 хвилин. B. subtilis був організмом, найбільш стійким до режимів дезінфекції за 1 хвилину.

Висновки

Результати нашого дослідження демонструють відносну ефективність дезінфекції для різних режимів, що оцінюються, за умови, що для обраних дезінфікуючих засобів встановлено правильний час експозиції, що є важким станом для забезпечення в напруженому клінічному середовищі. Ми прийшли до висновку, що одноразова призмова тонометрія забезпечує безпечну альтернативу тонометрії Гольдмана.

Вступ

Кабінет офтальмолога - це середовище зі значним потенціалом для передачі інфекцій. Хвороботворні мікроорганізми регулярно вводяться в кабінет пацієнтами із системними або очними інфекціями, і око особливо схильне до зараження грамнегативними паличками, аденовірусом, простим герпесом та грибками, що переносяться забрудненими офтальмологічними інструментами. 1

Крім того, епідемія синдрому набутого імунодефіциту (СНІД) та виділення вірусу імунодефіциту людини (ВІЛ) із людських сліз, 2 рогівки, 3 та контактних лінз, 4 зосередили увагу на зараженому пацієнті як джерелі передачі захворювання хвороба.

Найчастіше інфекції, що передаються забрудненим офтальмологічним обладнанням, були інфекціями з аденовірусом 5, 6, 7, але теоретично різні захворювання можуть поширюватися однаково. Хоча деякі очні інфекції, такі як аденовірусний кон’юнктивіт, є самообмеженими, і їх тривалі наслідки дуже рідкісні, деякі агенти відповідають за курси, що загрожують зору. Серед них бактерії та акантамеба стали набагато більш поширеними з моменту появи широкого застосування м’яких контактних лінз і можуть бути відповідальними за випадки зараження, досить серйозні, щоб вимагати проникної кератопластики або навіть енуклеації як лікування. 8, 9

Віруси гепатиту В (ВГВ) та С (ВГС) набагато частіше зустрічаються у населення, ніж ВІЛ 10, 11, і можуть спричинити хронічний гепатит. Було показано, що інфекція гепатиту В може передаватися лише після інфекційного опромінення очної поверхні. 12

Виділення вірусу гепатиту С із слізної рідини та водянистої рідини 13, 14, 15, 16 підвищує можливість передачі вірусу гепатиту С під час офтальмологічного обстеження, тобто тестування тонометрії Гольдмана та тестування контакту кришталика. 17

Можливий ризик горизонтальної передачі vCJD через контактну тонометрію викликає занепокоєння. 18, 19, 20, 21

Тонометричні головки, що використовуються для вимірювання внутрішньоочного тиску, безпосередньо контактують з рогівкою, і тому становлять високий ризик перехресної інфекції. 1

Наконечники тонометра часто визначені головними носіями інфекції. 22, 23 Профілактика всіх інфекцій бажана, але це особливо важливо у випадку ВІЛ та вірусу гепатиту С, оскільки в даний час неможливо імунізувати проти цих вірусів.

Хороша гігієнічна практика, включаючи миття рук, є логічним першим кроком до зменшення поширення інфекції та належною медичною практикою для дезінфекції будь-якого офісного обладнання, яке безпосередньо контактує з пацієнтами.

Якщо їх не продезінфікувати ефективно, наконечники тонометра Гольдмана можуть представляти можливий спосіб передачі інфекції. 17

Огляд літератури виявляє, що для тонометричних призм пропонується багато методів дезінфекції, навіть якщо не завжди ясно, які організми видаляються, а які можна залишити при кожному режимі. 24

Хімічні дезінфікуючі засоби мають різну здатність знищувати патогенні бактерії, такі як синьогнійна паличка, Serratia marcescens та золотистий стафілокок. Показано, що ВІЛ 25, 26, 27, 28 сприйнятливий до більшості схем хімічного очищення, в той час як ці агенти відрізняються своєю здатністю знищувати спори грибків, пріонів та акантамеби. Насправді, літературні дані повідомляють про деякі проблеми, пов'язані з ефективністю дезінфікуючого засобу (відповідна концентрація та час витримки, різні взаємодії in vitro та in vivo між досліджуваними штамами та бактерицидами), навіть з огляду на наслідки пошкодження призми тонометра та поглиблення ятрогенна рогівка та помутніння строми, спричинене неповним видаленням Дезінфікуючий засіб з кінчика тонометра. 7, 29, 30, 31, 32 Отже, в кабінеті офтальмолога дуже важко легко та безпечно знайти ідеальну систему хімічної дезінфекції для призми тонометра.

Центри з контролю та профілактики захворювань (CDC) та Американська академія офтальмології (AAO) встановили рекомендації щодо дезінфекції контактних лінз та тонометрів в офісі. 33

Метою цього дослідження було оцінити придатність деяких режимів очищення та дезінфекції, рекомендованих виробниками тонометрів та керівництвом CDC та AAO, використовуючи стерильні одноразові наконечники тонометра, забруднені на їх контактних поверхнях різними мікроорганізмами, що належать до найбільш частих видів. Відповідає за інфекції рогівки. Це дозволить нам оцінити ризик горизонтальної передачі шляхом контактної тонометрії та вирішити питання, чи слід віддавати перевагу суворій дезактивації багаторазових призм чи використанню стерильних одноразових наконечників або протекторів.

Матеріали і методи

Використовували одноразові стерильні наконечники тонометра (TONOJET L900, Luneau, Франція), виготовлені з прозорого акрилового пластику, але з тим же діаметром наконечника, що і стандартна призма тонометра Goldmann.

Для аналізу використовували чотири різні штами: P. aeruginosa ATCC 15 442, S. aureus ATCC 6538, Bacillus subtilis ATCC 6633 та Candida albicans ATCC 10231. Штами вирощували на агарових плитах Мюллера-Хінтона та Сабуро, відповідно, при 35 ° С протягом 48 год. Ізольовані колонії суспендували у стерильному сольовому розчині, забуференному фосфатом (PBS), при оптичній щільності, що відповідає 10 8 одиницям колонії, що утворюють на мл, для кожного організму, що підлягає аналізу згідно з Європейським комітетом стандартизації (ECS) 34 для дезінфекції на поверхнях. Послідовне розведення посівного матеріалу проводили в 0,85% сольовому розчині і висаджували в двох примірниках на агар Мюллера-Хінтона та Сабуро для перевірки розміру посівного матеріалу та чистоти суспензій.

Оцінювали антибактеріальну та протигрибкову ефективність наступних методів дезінфекції: (а) прибирання рушниками, змоченими ®, Haag-Streit International) протягом 1, 5 та 15 хв. Жодна обробка та хімчистка (проста чистка) не використовувались як процедури контролю росту.

Випробування проводили за такою процедурою: (i) кінчик тонометра змочували протягом 10 с, що відповідає середньому часу тонометрії, у суспензії досліджуваного організму; (ii) весь тонометр замочували в дезінфікуючому розчині під час випробування на 1, 5 і 15 хвилин, або, навпаки, кінчик тонометра очищали протягом 10 с сухими серветками або хвилиною (відповідно до інструкцій виробника); (iii) тонометр промивали під помірним потоком стерильного сольового розчину протягом 5 с, потім двічі сушили стерильним паперовим рушником; (iv) кінчик тонометра міцно притискали до поверхні агарової пластини Мюллера Хінтона або Сабуро протягом 10 с; (v) пластини інкубували при 37 ° C і досліджували на ріст через 24 і 48 годин.

Зростання чотирьох мікробних видів оцінювали за допомогою візуального огляду пластин, які оцінювали наявність очікуваних колоній у місцях щеплення на поверхні агару. Мікробні види можна легко диференціювати за характерною пігментацією колоній P. aeruginosa та S. aureus, за обширним, пір’ястим та розширеним виглядом видів B. subtilis та за білим, кремовим, дріжджовим виглядом видів C. albicans. Ідентифікація морфологічних колоній була підтверджена фарбуванням Грама. Враховувались лише колонії, що демонстрували очікувані макроскопічні та мікроскопічні ознаки.

Всі тести проводились тричі, і всі умови перевірялись у двох примірниках.

Результати

Результати дезінфекційних випробувань зведені в таблицю 1.

Повний розмір таблиці

З наших результатів, 10-сантиметрові серветки були ефективними у всіх тестованих штамах, за винятком B. subtilis. Замочування в Пантасепті ® повністю ліквідувало всі забруднюючі мікроорганізми за 1 хвилину, тоді як 0,5% бензалконію хлорид після 1 хвилини замочування був ефективним для всіх штамів, крім B. subtilis, для дезінфекції яких потрібно було 5 хвилин. 3% розчин розчину перекису водню був ефективним лише тоді, коли процедуру дезінфекції проводили принаймні 5 хвилин, незалежно від випробуваного штаму. Сухе чищення тканини не було ефективним для усунення забруднень.

Обговорення

В офтальмології золотим стандартом для вимірювання внутрішньоочного тиску залишається тонометрія Гольдмана. Апланаційна тонометрія Гольдмана виконується у більшості пацієнтів, які перебувають у кабінеті офтальмолога. Недавнє дослідження підрахувало, що тонометрія проводиться 122 мільйонам пацієнтів на рік 35, і добре відомо, що деякі захворювання, такі як аденовірусний кератокон'юнктивіт, можуть передаватися ненавмисно під час цього дослідження. Тоді 7-тонометричні призми можуть представляти собою основний засіб перехресного зараження. Крім того, приблизно 70 мільйонів людей у ​​всьому світі носять контактні лінзи, часто для тривалого носіння, тому не дивно, що мікробний кератит, пов'язаний з контактними лінзами, все частіше стає глобальною проблемою охорони здоров'я. 8 Власне, Pseudomonas spp. та Staphylococcus spp. є найбільш часто виділеними мікробами при інфекціях рогівки, пов’язаних із контактними лінзами, за якими слідують найпростіші (наприклад, Acanthamoeba spp.) і рідше гриби. 8

Хоча більшість бактерій чутливі до короткого впливу багатьох поширених дезінфікуючих засобів, 36 вірусів, особливо тих, що не мають ліпідної оболонки, можуть бути більш стійкими: 37, наприклад, вірус простого герпесу може жити до 8 годин, зберігаючи вологість 38 і аденовірус може вижити. 7-14 днів при кімнатній температурі на сухій поверхні. 39

Рекомендації CDC пропонують очистити наконечник тонометра, а потім продезінфікувати його 5-хвилинним замочуванням у розведенні гіпохлориту натрію 1: 10 (побутовий відбілювач), 3% перекису водню або 70% ізопропілового спирту. ААО разом із Національним товариством з профілактики сліпоти та Асоціацією офтальмологів контактних лінз прийняли ці рекомендації та додали можливість просто протирати кінчик тампоном із 70% ізопропілового спирту. 33

Встановлення ванночок у дезінфікуючих засобах протягом п’яти хвилин, йодофору та гіпохлориту натрію було ефективно проти аденовірусу. 40 Однак дослідження 41 показало, що ДНК вірусу гепатиту В все ще можна виявити за допомогою ланцюгової реакції полімерази на кінчиках тонометра після дезінфекції різними методами, включаючи 70% ізопропілової серветки, 70% етанолу, 10 хв. Мінімальне всмоктування 1% глутаральдегіду, тоді як просте промивання водою з милом видаляло всю виявлену ДНК вірусу гепатиту В.

Одне з потенційних занепокоєнь - висновок, що дуже поширений метод використання 70% ізопропілового спирту для дезінфекції знезаражує лише половину перевірених наконечників тонометра. 24

Способи дезінфекції серветки, безумовно, є більш зручними, ніж методи замочування, як з точки зору часу дезінфекції, так і меншого ризику пошкодження інструменту. Обробляючи лише кінчик тонометра, а не всю призму, можна запобігти пошкодженню призми, яке спостерігалося при тривалих режимах замочування 42, 43, 44, але зменшений час контакту може бути недостатнім для повної дезінфекції.

Коли застосовуються методи замочування, важливо промити кінчик тонометра, щоб видалити залишки відбілювача або перекису водню або дати алкоголю випаруватися перед сплощенням, щоб уникнути поглиблення ятрогенної рогівки та помутніння строми. 29, 30

Дотримання цих рекомендацій має значно зменшити поширення інфекцій.

Результати нашого дослідження демонструють різноманітні заходи дезінфекції відповідно до різних оцінених режимів. 0,5% розчин глутаральдегіду, рекомендований виробниками тонометрів, був швидко ефективним для всіх досліджуваних штамів. Хвилинні серветки не змогли усунути забруднення B. subtilis протягом 10 с, що відповідає часу контакту, запропонованому інструкціями виробника. Протимікробна дезінфекція не була досягнута протягом 5 хвилин за допомогою 3% перекису водню, незалежно від випробуваного штаму. Крім того, 0,5% розчин хлориду бензалконію вимагав 5-хвилинного замочування для знезараження кінчиків тонометра B. subtilis, підтверджуючи, що в наших експериментальних умовах B. subtilis був найбільш стійким організмом.

Тому час впливу дезінфікуючого засобу має першорядне значення для досягнення ефективного результату, і слід враховувати відмінності у здатності протистояти дезінфекції для різних видів мікробів.

Недостатня дезінфекція багаторазових призм несе ризик перехресної передачі вірусного та бактеріального кон'юнктивіту. Крім того, все більш зайнятий характер клінік ускладнює забезпечення належної дезінфекції призми Гольдмана після кожного використання. У зайнятій клініці необхідно контролювати ВГД пацієнтів через короткі проміжки часу, і важко забезпечити дезінфекцію призми Гольдмана протягом мінімального рекомендованого часу після кожного використання; у будь-якому випадку, найпоширеніший метод використання 70% ізопропілового спирту, тобто очищення, знезаражує лише половину перевірених наконечників тонометра. 24 Крім того, сумнівним є отримання достовірних показників тиску з призмами, пошкодженими режимами дезінфекції. 32

Усі ці міркування повинні змусити офтальмологів віддавати перевагу використанню одноразових наконечників тонометра у своїй щоденній клінічній практиці для усунення будь-якого ризику перехресної інфекції.

Нещодавні дослідження 48, 49, 50 демонструють точність і надійність одноразової призматичної тонометрії порівняно із золотим стандартом тонометрії Гольдмана. Висновки цих досліджень вказують на переваги одноразових призм, коротку криву навчання, простоту використання та відтворюваність результатів. Основним недоліком одноразових призм є фактор витрат, але широке використання значно знизить їх ціну.

Ми прийшли до висновку, що одноразова призмова тонометрія забезпечує надійну, ефективну та безпечну альтернативу тонометрії Гольдмана у звичайній клінічній практиці з перевагами усунення необхідності хімічної дезінфекції та усунення ризику перехресної інфекції.

Усі ці міркування застосовні не тільки до призм тонометра, але й до будь-якого офтальмологічного пристрою, який має прямий контакт з очною поверхнею пацієнтів і дезінфекція якого необхідна під час звичайної клінічної практики.