| Дату додано: | 25.01.2005 | Позначити: | 1 2 3 4 5 |
| Автор статті: | брия | ||
| Мову: | Підрахунок слів: | 4 644 | |
| Папір підходить для: | Університет | Кількість A4: | 19.2 |
| Середня оцінка: | 2.95 | Швидке читання: | 32м 0 с |
| Повільне читання: | 48м 0с |
3. Обробляйте та досліджуйте сечу кількісно та за посевами.
Збір матеріалів
Для дослідження культури сечу потрібно збирати таким чином, щоб виключити забруднення зібраної сечі. Середній потік сечі збирають у стерильну пробірку або спіральну сечу лише за недавно введеною спіраллю. Для маленьких дітей ми беремо колекцію з використанням поліетиленового пакета, який приклеюється через отвір до гирла уретри. Забір надлобковою пункцією - це прокол міхура пункційною голкою через черевну стінку (особливо у маленьких дітей). Сеча повинна бути оброблена протягом 2 годин. після збору.
Обробка матеріалів
Кількісно досліджують сечу, визначають кількість бактерій в мл сечі. Розведіть сечу 1: 100 50 мкл + 5 мл фізіологічного розчину. З такої розведеної сечі посійте 50 мкл на агар CLED і 50 мкл на MC. Нехай він просочиться приблизно 15 хвилин і прищепить на поверхню пластини ... ми не обпалюємо ручку між окремими турами.
Агар CLED - універсальне середовище - молотки G, коки G +. Пригнічує повзучий ріст Protea mirabilis (KA цього не робить). Агар МакКонкі - G-киянки, культивують протягом 24 годин. і оцінити кількість:
1,0 - ґрунти залишалися стерильними
2,1-4 колонії - понад 104 бактерії/1 мл сечі - незначна бактеріурія
3,5-50 колоній - 104 - 105 бактерій/1 мл сечі - підозра (можлива) бактеріурія
4. понад 50 колоній - понад 105 бактерій/1 мл сечі - значна бактеріурія
5,2 і більше видів бактерій - забруднена сеча
Якісна та кількісна оцінка чутливості до ATB - принцип дискового методу/пояснити, оцінити, прищепити штам та додати диски /.
4. Обробіть та дослідіть гній на наявність аеробних та анаеробних бактерій при гнійних захворюваннях.
Збір матеріалів
Тампон найчастіше беруть з хворих ділянок за допомогою ватного тампона. Він завжди береться з інтерфейсу між здоровою та пошкодженою тканиною. Рідкий матеріал збирають за допомогою пункційної голки в стерильну пробірку. Під час збору для анаеробного дослідження рідкий матеріал забирається у шприц, з якого ми виганяємо надлишок повітря і вводимо голку в гумову пробку. Шматочки тканини можна відправляти в пробірки, наповнені СО2. Можливі також транспортні ґрунти.
Обробка грунту - анаеробна
Матеріал інокулюють на KA, MC, SA. Розмножувальним середовищем є печінковий відвар, який через 24 години. ми будемо чекати КА. Для мазків з голови ми також додаємо СА (гемофілія).
Обробка матеріалу для аеробного вирощування
Анаеробні бактерії характеризуються тим, що вони не переносять кисень у своєму середовищі. За здатністю рости в присутності O2 виділяємо основні групи: - аеротолерантний (5% O2) - Clostridium perfringens
-середньо важкі анаероби (1-2% O2), сюди входять більшість медично важливих видів - Cl. спорогени, Bacteroides fragilis
-суворі анаероби (менше 1% O2) - Cl. haemolyticum
Інокулюється на агарі VL (Veillons) та на агарі VL ATB (сильно насипані ґрунти, вони містять відновлюючі речовини, зменшуючи окислювально-відновний потенціал ґрунту, це величина електричної напруги навколишнього середовища). Анаероби ростуть за від’ємних значень окислювально-відновного потенціалу, коли в середовищі переважають відновлені речовини. Анаероби не можна захистити від впливу, наприклад до токсичності перекису водню. Перекис водню утворюється в результаті реакції кисню з іонами водню. Анаеробні бактерії не мають ферменту пероксидази (або неефективні). Середовищем розмноження є VL відвар, який через 48 годин. щеплений на агарі VL. Перед використанням відвар VL необхідно регенерувати кип’ятінням,
на водяній бані для видалення надлишку O2. Для матеріалів із підозрою на клостридійну інфекцію ми також прищеплюємо агар VL парафіном. Прищеплюємо щеплений матеріал парафіном (10 хв, 80 ° С), звичайні бактерії гинуть, клостридії утворюють спори. Ми культивуємо протягом доби, якщо були клостридії, парафін виштовхують вгору. Ми зробимо препарат - великі, грубі молотки G +.
Анаеробні матеріали повинні культивуватися в анаеробному середовищі - АНАЕРОСТАТ. Посудина містить тримач для трубки, генератор CO2 і H, каталізатор та екологічний індикатор. Цілу посудину поміщають у термостат і культивують протягом 48 годин.
a.Прямий мікроскопічний зразок, забарвлений за Грамом, орієнтаційне фарбування, особливо для клостридій/грубих молотків G +/
b. Тверді грунти - агар VL з кров’ю, агар VL з ATB (VAN, KAN, STR) для придушення росту небажаних бактерій
c. рідкий ґрунт - бульйон VL, обробляти в анаеробному середовищі або покритий шаром стерильного парафіну, перед використанням прокип’ятити (регенерувати, видалити повітря з ґрунту)
д. судини для гемокультури - спеціальні для культивування анаеробів, що беруть кров безпосередньо в судини
1. виведення кисню з навколишнього середовища хімічним шляхом, реакція пірогалолу з содою. Потреби: чистий пірогалол, бікарбонат натрію, фільтрувальний папір, клейка стрічка, чашки Петрі з агаром VL. Процедура: змішайте 4: 1 на фільтрувальному папері, складіть папір, приклейте, змочіть, заклейте чашу скотчем або покрийте воском.
2. Анаеростат OXOID - каталізатор (металева сітка з гранулами з шаром паладію, після використання повинна бути регенерована). Суміш, яка після додавання води виділяє Н2 і СО2 за допомогою каталізатора, поєднує наявний кисень з воднем, утворюючи Н2О при відносно низькій температурі (приблизно 150 ° С). Показник анаеробного середовища.
3. Біологічний метод видалення кисню з навколишнього середовища з використанням штаму Serratia marcescens.
4. Фізіологічний метод - витягання повітря та його заміщення азотом, СО2 або їх сумішшю.